На что реагирует перекись водорода с шипением кроме крови

Щиплет – значит работает. Или все же нет?

Поранились? Срочно бегите за зеленкой! Нет-нет, зеленка пачкается. Только йод, только хардкор! Или не только?

На самом деле, существует довольно много препаратов-антисептиков, «заточенных» под разные ситуации: от ухода за обширными ранами до обработки мелких порезов и царапин. В этой статье поговорим о том, с какой целью их стоит использовать, а с какой – нет.

Средства для очистки раны: перекись водорода, фурацилин и марганцовка

Эти антисептики применяют для промывания раны сразу после того, как вы порезались и поцарапались. Промывать этими растворами можно раны и на коже, и на слизистых оболочках. Однако здесь есть определенные тонкости.

Перекись водорода можно использовать для промывки ран только в виде 3% раствора. Если концентрация перекиси больше, то можно запросто получить ожог. Перекись водорода отлично борется с бактериями, а пена, которая «поднимается» в ране, вымывает твердые частички грязи. Кстати: чтобы эффект был лучше, перекись на ранку лучше лить струей, а не наносить ваткой или марлей. Хранить открытую перекись нужно в холодильнике, она будет работать еще месяц.

Раствор фурацилина в воде – отличное средство для обработки ран, в которые попала грязь. Если промыть ранку тонкой струей раствора, то можно не только «вымыть» из нее грязь, но и избежать нагноения. Правда, раствор фурацилина еще придется приготовить: растворить 10 таблеток в 1 литре горячей воды, и остудить. Если хранить раствор в банке из темного стекла вдали от солнечного света, раствором можно пользоваться 2 недели.

«Марганцовка» должна быть слабо-розового цвета. Чем ярче раствор, тем он концентрированнее. Если переборщить с розовым цветом, можно сжечь кожу и тем самым увеличить раневую поверхность. Слабый раствор подойдет для промывания свежих и нагноившихся ран на коже и слизистой. Правда, долго хранить его нельзя: для промывания ранок подойдет только свежая марганцовка.

Антисептики для первичной обработки очищенной ранки – хлоргексидин, спирт и мирамистин

Хлоргексидин – «волшебное» средство против бактерий, вирусов, простейших и грибов. Несколько миллилитров хлоргексидина, пролитого на очищенную перекисью водорода ранку, наверняка помогут избежать нагноения.

Мирамистин подойдет тем, кому нагноения избежать все-таки не удалось. Если развести 3-4 чайные ложки мирамистина в стакане воды, этим средством можно смело промывать нагноившиеся ранки.

Спиртом (40-70% раствором) стоит обработать края промытой перекисью и залитой хлоргексидином ранки. Саму ранку и слизистые спиртом «заливать» нельзя – это приведет к ожогу.

«Красящие» антисептики: йод, зеленка и фукорцин

Красящие антисептики действительно разноцветные, но объединяют их не только по этому принципу. И йод, и зеленка, и фукорцин предназначены строго для обработки краев ранки.

Царапину и порез заливать красящими антисептиками нельзя – вместо того, чтобы ускорить заживление, они «добавят» к ранке сильный ожог. Эти препараты нужны только для того, чтобы обеззаразить и подсушить края раны.

Пользоваться йодом, зеленкой и фукорцином стоит ровно до того момента, пока ранка не стала подживать. Дальше организм справится сам. Если эти красители нечаянно попадут на свежий рубец, это, напротив, замедлит восстановление кожи.

Важно: спиртовой раствор йода, который продают во всех аптеках, не так уж безобиден, как принято считать. Людям, страдающим болезнями щитовидной железы, дерматитами и заболеваниями почек, пользоваться йодом не рекомендуется.

Отсюда вывод: в домашней аптечке стоит иметь средство всех трех типов: что-нибудь для промывания ранки, ее первичной обработки, а также для дезинфекции краев. Не забывайте: у каждого антисептика есть свои особенности, поэтому использовать средство не по назначению (например, заливать зеленкой свежую ранку) уж точно не стоит.

Источник

Перекись водорода (Hydrogen peroxide)

Владелец регистрационного удостоверения:

Лекарственная форма

Форма выпуска, упаковка и состав препарата Перекись водорода

Раствор для наружного и местного применения 3% прозрачный, бесцветный, без запаха.

Вспомогательные вещества: натрия бензоат, вода очищенная.

Фармакологическое действие

Антисептическое средство из группы оксидантов. Обладает также гемостатическим эффектом. При контакте перекиси водорода с поврежденной кожей и слизистыми оболочками высвобождается активный кислород, при этом происходит механическое очищение и инактивация органических веществ (протеины, кровь, гной). Антисептическое действие перекиси водорода не является стерилизующим, при его применении происходит лишь временное уменьшение количества микроорганизмов.

Показания активных веществ препарата Перекись водорода

Воспалительные заболевания слизистых оболочек, гнойные раны, капиллярное кровотечение из поверхностных ран, носовые кровотечения. Для дезинфекции и дезодорирования: стоматит, тонзиллит, гинекологические заболевания.

Открыть список кодов МКБ-10

Режим дозирования

Побочное действие

Противопоказания к применению

Применение при беременности и кормлении грудью

Возможно применение при беременности и в период грудного вскармливания по показаниям, в рекомендуемых дозах.

Особые указания

Не применяют для орошения полостей.

Не рекомендуют использовать средство под окклюзионные повязки.

Источник

На что реагирует перекись водорода с шипением кроме крови

В частности, гипоксия головного мозга может возникнуть при вентиляции легких в случае низкой концентрации кислорода в дыхательном газе, при обструкции и отеке легких, при бронхоэктатической болезни, при закрытом пневмотораксе, при остановке сердца, при геморрагическом шоке, при внутриутробной гипоксии плода и при асфиксии новорожденного [5,13,15]. Кроме этого, до сих пор не разработана технология внутриматочной вентиляции легких у плода и подводной оксигенации крови у утопленника [4,14].

К счастью, в последние годы стала активно изучаться возможность замены газа кислорода на водный раствор перекиси водорода, который позволяет оксигенировать кровь и другие жидкости путем инъекционной инфильтрации [7,12]. При этом инъекция раствора перекиси водорода в венозную кровь превращает ее в артериальную кровь без участия легких и без аэрации крови дыхательным газом, поскольку кровь содержит фермент каталазу, а каталаза расщепляет перекись водорода на воду и молекулярный кислород [11]. В результате каталазной реакции повышается концентрация кислорода в плазме, а в эритроцитах образуется оксигемоглобин. При этом венозная кровь тут же теряет темно-вишневый цвет и приобретает ярко-красный цвет [12].

Показано, что раствор перекиси водорода может стать конкурентом газа кислорода и артериальной крови при реанимации людей в критических состояниях, поскольку простая инъекция этого раствора способна повысить концентрацию кислорода практически моментально в любой части нашего тела независимо от работы сердца и движения артериальной крови по кровеносным сосудам [11]. Именно поэтому для прямой оксигенации коры головного мозга в 2014 году было предложено производить инъекцию раствора перекиси водорода непосредственно в кору головного мозга [11]. Поскольку технология обеспечения клеток коры головного мозга кислородом путем интракраниальной инъекции пока не получила законного разрешения, предполагается, что содержание кислорода в головном мозге можно повысить путем введения раствора перекиси водорода в желудок.

Цель исследования – изучить влияние раствора перекиси водорода на устойчивость организма к гипоксии при введении препарата в желудок.

Материалы и методы исследования

Влияние внутрижелудочного введения раствора перекиси водорода на устойчивость организма к гипоксии было исследовано в острых экспериментах с аквариумными рыбками по описанной ранее методике [7,9,10]. Исследования были проведены на 10 взрослых живых рыбках породы гуппи обоего пола массой по 300-320 мг, на 10 взрослых живых рыбках породы голубые неоны обоего пола массой по 290 – 310 мг, на 10 взрослых живых рыбках породы раcборы трехлинейные обоего пола массой по 1200 – 1300 мг и на 10 взрослых живых рыбках породы меченосцы женского пола массой по 6200 – 6400 мг. Моделирование острой гипоксии достигалось помещением каждой рыбки в пресную воду при температуре +25 – +26°С внутри отдельной пластиковой прозрачной герметичной емкости. Рыбки породы голубые неоны и гуппи помещались в воду объемом 5 мл, рыбки породы расборы трехлинейные – в воду объемом 10 мл, рыбки породы меченосцы помещались в емкость с водой объемом 20 мл. Исследования были проведены при давлении атмосферного воздуха в пределах 755 – 765 мм ртутного столба. В роли емкости были использованы пластиковые одноразовые инъекционные шприцы. В процессе гипоксии регистрировалась динамика двигательной активности рыб, в частности частота дыхательных движений жаберных дуг, частота открывания рта, частота и амплитуда колебаний плавников, а также последовательность изменения их цвета вплоть до полного окончательного обездвиживания рыбок и их смерти [7,10].

Было проведено 2 серии экспериментов с рыбками. В первой серии экспериментов перед началом опыта рыбкам производилась внутрибрюшинная инъекция 0,1 мл стерильного раствора 0,9 % натрия хлорида для инъекций или 0,1 мл стерильного раствора 0,9 % натрия хлорида и 0,1 % перекиси водорода. Во второй серии экспериментов в желудок рыбки вводилась в объеме 0,05 мл или 0,1 мл пресная вода (контроль) или пресная вода, включающая 0,05 % перекиси водорода (опыт). Введение жидкости в желудок рыб осуществлялось с помощью соответствующего желудочного мини-зонда, свободный конец которого был надет на инъекционную иглу, соединенную с инсулиновым шприцем, заполненным исследуемой жидкостью.

Антигипоксическое действие раствора перекиси водорода проверено на людях с помощью функциональной пробы Штанге. Для этого было определено значение пробы Штанге у 5 взрослых здоровых мужчин добровольцев в возрасте 21 – 14 года через 1 минуту после приема ими внутрь на голодный желудок 100 мл питьевой воды или 100 мл питьевой воды с 0,3 % перекиси водорода с газом кислородом при избыточном давлении 0,2 атм (при +8ºС). Принимаемые внутрь жидкости имели температуру +25°С.

Статистическая обработка результатов проведена с помощью программы BIOSTAT по общепринятой методике.

Результаты исследования и их обсуждение

Полученные результаты показали, что аквариумные рыбки всех исследованных нами пород в контрольной и в опытной сериях экспериментов не выдерживали длительное нахождение в ограниченном объеме воды внутри герметичной емкости и неминуемо погибали. В процессе выживания рыбок в условиях углубляющейся гипоксии происходили последовательные изменения их двигательной активности, которые под действием перекиси водорода изменялись следующим образом: в умеренных дозах перекись водорода продляла, а в чрезмерно высоких дозах укорачивала жизнь рыбок в герметичной емкости.

При этом были установлены следующие закономерности. Независимо от введения перекиси водорода рыбам сразу после герметизации емкости двигательная активность рыбок не отличалась от нормы. Длительность этого периода двигательной активности рыбок определялась величиной объема воды, что, по-видимому, определялось запасом в ней кислорода, поскольку увеличение объема воды увеличивало продолжительность, а уменьшение объема воды уменьшало продолжительность их жизни в герметичной емкости. Затем в момент снижения концентрации кислорода в воде до критически низкого значения рыбки полностью прекращали свою двигательную активность и становились практически неподвижными. Показано, что длительность периода неподвижного состояния рыбок определяется резервами их адаптации к гипоксии. После исчерпания резервов адаптации к гипоксии рыбки внезапно открывали рот во всю его ширину, одновременно с этим увеличивали и учащали вентиляционные движения ротовой полости и жаберных дуг, усиливали пропускание воды через открытый рот и жабры, а также колебательные движения боковых плавников, хвоста и всего тела. Одновременно с этим рыбки начинали судорожно метаться по емкости, как бы пытаясь найти выход из нее, и периодически испражнялись.

Период судорожных подергиваний рыб длится около минуты, после чего рыбы окончательно становятся неподвижными, но продолжают пропускать воду через полуоткрытый рот и жабры. В таком состоянии рыбы опускаются на дно емкости, где тело у половины рыбок остается спиной вверх, а у другой половины – вверх животом. Через несколько секунд рыбки всплывают вверх, остаются в неподвижном состоянии, но сохраняют полость рта широко открытой, а их жабры продолжают медленно прогонять воду через рот еще около 1 минуты. После этого рыбки замирают окончательно.

Влияние перекиси водорода на продолжительность жизни рыбок в условиях гипоксии было изучено на рыбках породы меченосцы и расборы трехлинейные. Первоначально влияние внутрибрюшинной инъекции 0,1 мл раствора 0,9 % натрия хлорида и 0,1 % перекиси водорода было изучено на рыбках породы расборы трехлинейные. Результаты опытов показали, что внутрибрюшинная инъекция перекиси водорода в указанной дозе ускоряет наступление смерти рыбок на 7,44 ± 0,62 минут (Р ≤ 0,05, n = 5) по сравнению с контролем, то есть на 20 %.

Вслед за этим было сделано предположение о том, что в случае введения в желудок рыб раствора перекиси водорода, всасывание кислорода не будет столь интенсивным, поэтому рыбки вряд ли будут отравлены кислородом. Кроме этого, для уменьшения всасывания кислорода из желудка решено было ввести в него раствор перекиси водорода с меньшей концентрацией, а именно – с концентрацией 0,01 и 0,05 %. При этом исходя из разницы размеров меченосцев и расборов трехлинейных с целью внутрижелудочной оксигенации в желудок рыбок породы расборы трехлинейные было введено по 0,05 мл, а в желудок рыбок породы меченосцы – по 0,1 мл раствора 0,05 % перекиси водорода.

Результаты опытов показали, что после введения раствора 0,01 % перекиси водорода в желудок меченосцев и расборов трехлинейных динамика двигательной активности рыб осталась прежней. Однако введение раствора 0,05 % перекиси водорода улучшило показатели динамики двигательной активности и выживаемости рыбок в герметичной емкости с водой (таблица).

Как следует из данных, приведенных в таблице, введение в желудок меченосцев и расборов трехлинейных раствора 0,05 % перекиси водорода удлиняет продолжительность жизни рыб в герметичной емкости с водой почти на 20 %.

Хронология динамики периодов двигательной активности меченосцев в 20 мл и расборов трехлинейных в 10 мл пресной воды при +25°С с указанием времени в минутах с начала гипоксии при наличии в желудке рыб пресной воды (контроль) или пресной воды с 0,05 % перекиси водорода (опыт). При этом рыбкам породы расборы трехлиненые жидкость вводилась в желудок в объеме 0,05 мл, а меченосцам – в объеме 0,1 мл

Начало периода неподвижного состояния

Внезапное появление единичных дыхательных движений жабрами

Внезапное появление неожиданных активных дыхательных движений ртом и жабрами

Полное и окончательное неподвижное состояние и смерть

Источник

Стоит ли так активно использовать 3% раствор перекиси водорода при хирургических вмешательствах?

*Пятилетний импакт фактор РИНЦ за 2020 г.

Читайте в новом номере

В практике врача–хирурга при первичной хирургической обработке ран, обработке гнойных ран, гнойников, трофических язв, некротических деффектов кожи при сахарном диабете и прочих заболеваниях часто (если не сказать больше – постоянно) используется стандартный 3% раствор перекиси водорода. Его льют направо и налево, особо не задумываясь, так как согласно мнению всех старых и новых корифеев хирургии высвобождающийся атомарный кислород при воздействии перекиси водорода с белками тканей (Н2О2 Ґ Н2О+О) уничтожает бактерий, а пена, возникающая при данной реакции, активно удаляет частички гноя и загрязнений из полости раны. Все это прекрасно, но стоило бы задуматься над тем, что раз атомарный кислород разрушает весьма прочную стенку бактерий, то насколько агрессивно он может воздействовать на достаточно нежную стенку клетки?

Как видно из рисунка 1, при любом повреждении ткани всегда имеется несколько зон деструкции клеток. Первая зона – нормальная ткань, говорит сама за себя, здесь повреждений нет, если гнойный процесс не пойдет дальше, то никаких изменений в ней не будет. Третья зона – зона гнойной деструкции или зона разрушения клеток, которая нуждается в полном удалении из раны, так как именно она нагнаивается или разрушается аутоагрессией макроорганизма.
Но для удаления этой зоны не обязательно использование раствора перекиси водорода, так как все разрушенные клетки, гной достаточно легко смываются раствором банального фурациллина (под давлением из шприца).
Вторая же зона – «пограничная», это зона «полуживых» клеток, которые не смоются ничем. Мембрана этих клеток непосредственно контактирует с полостью раны и разрушить их атомарным кислородом элементарно. После обработки этой зоны раствором перекиси водорода она переходит в состояние, аналогичное зоне гнойной деструкции клеток (рис. 2). Далее классическая обработка раны заканчивается (что логично – гноя нет, грязи нет, все можно смело зашивать или накладывать повязку с различными растворами или мазями, в зависимости от ситуации). Но получается, что мы зашиваем изначально нежизнеспособную, склонную к нагноению ткань! То есть мы своими действиями способствуем длительному незаживанию язвенных поражений кожи, нагноению швов и прочим гнойно–деструктивным изменениям. В своей практике врача–хирурга медицинского пункта части, где я занимался практически всей малой хирургией (от панарициев до косметического удаления атером на лице) приходилось постоянно сталкиваться с тем, что после наложения швов в 99–100% случаев на следующий день (в течение 2–3 суток) отмечалось гнойно–геморрагическое отделяемое даже из зашитой в асептических условиях постоперационной раны. Вначале я объяснял для себя этот факт неполной асептикой вмешательства, но после того, как я отказался от применения раствора перекиси водорода, число этих осложнений уменьшилось в десятки раз! Отказ произошел после того, когда я обратил внимание на то, что при обработке раны раствором перекиси водорода в ней на краях образуются белесые участки (напоминающие по внешнему виду вареное мясо). При захвате их пинцетом с целью извлечения из раны они не удалялись, так как являлись логичным продолжением жизнеспособной ткани («пограничная зона» на рисунке 1).
На сегодняшний день я практически полностью отказался от использования раствора перекиси водорода в своей хирургической практике. Раны заживают в 2–3 раза быстрее, рубец более тонкий, нагноений швов практически нет. Я готов выслушать любое мнение по адресу drkolya@rambler.ru.

Бывший начальник медицинской службы в/ч 30683
капитан м/с Н. Трошин

Источник

На что реагирует перекись водорода с шипением кроме крови

Гипоксическое повреждение клеток коры головного мозга, возникающее вследствие исчезновения кислорода в нем, является непосредственной причиной биологической смерти большинства людей и животных на Земле [9-3, 23, 28]. Поэтому именно кислород является настоящим антигипоксантоми самым универсальным антисмертельным средством [10, 16, 24].Тем не менее, современные медицинские технологии применения кислородав роли оживляющего средства приклинической смертиимеют низкую эффективность [8, 11, 19, 20]. На наш взгляд, причиной низкой клинической эффективности кислорода является то, что онвводитсяв виде газа и вводится не в головной мозг и даже не в кровь, а в дыхательные пути пациентов [10, 19, 21].

В то же время, очевидно, что защитить клетки коры головного мозга от гипоксического поврежденияможно только с помощью повышения концентрации кислорода внутри клеток либо с помощью уменьшения их температуры (охлаждения вплоть до 0°С) [2, 3, 9, 10, 11, 12, 14, 15]. Из этого следует, что для предотвращения клинической смерти кислород следует вводить не в легкие, и даже не в кровь, а непосредственно в ткань головного мозга!

Тем не менее, перспективность замены газообразного кислорода в воде и в тканях человека и животных на органическую кислоту перекиси водорода с целью продления жизни людей и животных изучена недостаточно.

Целью исследования являетсядемонстрация фармакологической активности раствора перекиси водорода.

Материалы и методы исследования

Опыты по изучению возможностинасыщения кислородом эритроцитов венозной крови человека с помощью раствора перекиси водорода проведены в лабораторных условиях при температуре +25°Сс 35 порциями стандартной донорской венозной крови. Для этого каждаяпорция крови объемом по40 млпомещаласьв прозрачные полиэтиленовые пакетыобъемом по 100 мл. Каждый полиэтиленовый пакет имел два нижних отверстия.С помощью штативов, установленных на лабораторном столе, пакеты с кровью были подвешены вертикально в положении отверстиями вниз и с вставленными в них инъекционными иглами, одна из которых была соединена с устройством для переливания крови, другая – со шприцем, заполненным одним из выбранных растворов при комнатной температуре. Затем в каждую емкость из шприца вводились исследуемыерастворы в объеме по 5 мл каждый, после чего наблюдали на глаз и с помощью УЗИ за состоянием крови на протяжении 60 минут.

Ультразвуковое исследование консервированной крови, находящейся внутри пластикового пакета,проведено с использованием прибораэкспертного класса ALOKA SSD – ALPHA 10. В качестве датчика был использован стандартный датчик конвексного типа с частотой 3 – 7 МГц [4, 13]. Ультразвуковые исследования проведены по стандартной методике[13,17].

В опытах было исследовано влияние следующих растворов:

1. Раствор 0,3% перекись водорода и 1,7% натрия гидрокарбоната;

2. Раствор 0,3% перекиси водорода, 0,85% натрия хлорида и 0,10% натрия гидрокарбоната;

3. Раствор 0,29% перекиси водорода, 0,85% натрия хлорида и 0,10% натрия гидрокарбоната;

4. Раствор 0,10% перекиси водорода, 0,85% натрия хлорида и 0,10% натрия гидрокарбоната;

5. Раствор 0,06% перекиси водорода, 0,85% натрия хлорида и 0,10% натрия гидрокарбоната;

6. Раствор 0,05% перекиси водорода, 0,85% натрия хлорида и 0,10% натрия гидрокарбоната;

7. Раствор 0,04% перекиси водорода, 0,85% натрия хлорида и 0,10% натрия гидрокарбоната.

Осмотическая активность растворов была определена с помощью осмометра марки VAPRO 5600 (USA. В качестве контроля был использован изотонический раствор 0,9% натрия хлорида [5, 6, 22].

Опыты по изучению динамики состояния рыб при острой смертельной гипоксиипроведены на 100 живых аквариумных рыбках породы гуппи и голубые неоны обоего пола массой по 280-330 мг. Моделирование острой гипоксии у рыбок достигалось путем помещения каждой рыбки в пресную воду при температуре +15 либо +25°С, находящуюся внутри отдельной пластиковой прозрачной герметичной емкости объемом 5 мл (в этой роли были использованы пластиковые инъекционные шприцы). Проведено 2 серии опытов. В контрольной серии опытов регистрировалась динамика двигательной активности рыб, цвета их плавников идлительность нахождения их живыми в обычной пресной воде внутри герметичной емкости после дополнительного введения 10 мкл дистиллированной воды. В опытной серии проводились аналогичные исследования, но в воду к рыбам вводилось10 мкл дистиллированной воды, содержащей различные концентрации перекиси водорода. При этом проводилась киносъемка двигательной активности рыб вплоть до их полного обездвиживания и смерти [13, 14, 16, 17].

Статистическая обработка результатов проведена с помощью программы BIOSTAT по общепринятой методике.

Результаты исследования
и их обсуждение

Предварительно нами был проведен анализ состава известных растворов, содержащих перекись водорода. Оказалось, что все они представляют собой санитарно-гигиенические средства, предназначенные исключительно для наружного примененияс целью санации гнойных ран.Было выяснено, что все известные антисептические, дезинфицирующие и санирующие растворысодержат перекись водорода в концентрациях, превышающих 0,3%. Помимо перекиси водорода в состав многих известных растворов входит гидрокарбонат натрия, который включается для умеренного защелачивания, оптимизации щелочного гидролиза и разжижения густых гнойных масс. С этой целью растворы включают гидрокарбонат натрия в концентрации 1,7 – 10% [22].

Предполагалось, что известные растворы перекиси водорода и натрия гидрокарбоната при взаимодействии с кровью вызовут бурное образование газа кислорода и кровавой пены.Для проверки данного предположения была проведена серия опытов по взаимодействию с кровью раствора 0,3% перекиси водорода и 1,7% натрия гидрокарбоната. Опыты были проведены с этим раствором потому, чтоэтот раствор имеет самые низкие концентрации ингредиентов и поэтому именно он должен обладать самой низкой агрессивностью в отношении крови.

Однако полученные нами результаты показали, что кровь при взаимодействии с этим растворомбурно вспенивалась, хотя и немедленно изменяла свой цвет с темно-вишневого на алый. Причем, кровавая пена алого цвета тут же увеличивала внутренний объем содержимого пакета практически в 2 раза и пузырилась. Кровавая пена и пузыри сохранялись 16,3 ± 0,1 минут (Р ≤ 0,05, n = 5), после чего порция крови приобретала вид жидкости, лишенной пузырьков газа, и сохраняла алый цвет на протяжении всего периода наблюдения.

Эти результаты убедили нас в том, что бурное образование кровавой пены происходит из-за активного внутритканевого образования пузырьков газа кислорода под влияниемкаталазной реакции в условиях значительной щелочности, поскольку перекись водорода и натрия гидрокарбонат находятся в повышенных концентрациях. Дополнительное образование внутри пакета с кровью равного объема кровавой пены, которая безудержно перемещается во всех возможных направлениях, исключает безопасное применение раствора 0,3% перекиси водорода и 1,7% натрия гидрокарбоната для инъекционной сатурации кислородом консервированной венозной крови.

В связи с этим было решено, с одной стороны, уменьшить концентрацию перекиси водорода и натрия гидрокарбоната в растворе, а с другой стороныповысить безопасность средства за счет придания раствору величины осмотической активности в пределах 280 мОсмоль/л воды.Для этогобыло решено взять за основу изотонический раствор 0,9% натрия хлорида, который затем модифицировали и придали ему физиологическую щелочность и буферность с помощью натрия гидрокарбоната в концентрации 0,1%. В связи с тем, что раствор 0,1% натрия гидрокарбоната обладает самостоятельной осмотической активностью в пределах 35 мОсмоль/л воды, было решено уменьшить концентрацию натрия хлорида в растворе.Теоретические расчеты показали, что для сохранения осмотической, щелочной и буферной активности в пределах физиологического уровня раствор должен содержать0,85% натрия хлорида и 0,1% натрия гидрокарбоната. Затем было проведено определение осмотической активности указанного раствора прямым методом. Полученные нами результаты подтвердили это предположение.

После этого оставалось определить то, в какой концентрации должна находиться в этом растворе перекись водорода. С этой целью нами были проведены лабораторные исследования с донорской кровью и модифицированными изотоническим раствором 0,85% натрия хлорида и 0,10% натрия гидрокарбоната, в который дополнительновводилась перекись водорода в концентрации0,3%, 0,29%, 0,10% 0,06%, 0,05% или 0,04%.

Первая серия опытов была проведена с раствором 0,85% натрия хлорида, 0,10% натрия гидрокарбоната и 0,30% перекиси водорода. Показано, что сразу же после введения в кровь этого раствора в крови началось внутритканевое газообразование и бурное формирование кровавой алой пены. При этом содержимое пакета разделилось на две фракции: на жидкую кровь, оставшуюся внизу, и кровавую пену, оказавшуюся вверху. В результате пакет разбух из-за того, что объем содержимого увеличился за счет газа и пены. Процесс образования пузырьков газа в крови и пены прекратился через 10,4 ± 0,5 минут (Р ≤ 0,05, n = 5) после введения. Затем еще через 3,3 ± 0,05 минут (Р ≤ 0,05, n = 5) почти вся кровавая пена разрушилась, кровь заняла собой нижнюю часть пакета и на протяжении 60 минут наблюдения оставалась алого цвета.

Вторая серия опытов была проведена с раствором 0,85% натрия хлорида, 0,10% натрия гидрокарбоната и 0,29% перекиси водорода. Показано, что через 4,5 ± 0,15 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) после его введения в пакет с кровьюв нейначиналось умеренное внутритканевое газообразование, под влиянием которого через 14,3 ± 0,7 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) темно-вишневый цвет крови менялся на алый цвет. Ультразвуковое исследование крови, которое было проведено сквозь стенку пакета, показало, что в ней происходило образование пузырьков газа и уменьшение ультразвуковой эхогенности крови. Пузырьки газа имели мелкие размеры, постепенно перемещались кверху, размещались в верхнем слое крови и через несколько секунд лопались без образования существенной массы пены. Через 3 минуты после инъекции раствора в кровь было произведено выливание крови из пакета через вторую инъекционную иглу с помощью устройства для переливания крови. В результате выливания крови на чашку Петри обнаружено, что при этом удалось вылить из пакета практически всю кровь, которая сохраняла алый цвет. Причем, кровь вытекала из устройства наружу без пузырьков газа.Кровь внутри пакета сохраняла алый цвет на протяжении всего последующего периода наблюдения.

Третья серия опытов была проведена с раствором 0,85% натрия хлорида, 0,10% натрия гидрокарбоната и 0,10% перекиси водорода. Показано, что через 5,0 ± 0,20 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) после его введения в пакет с кровью в ней начиналось умеренное внутритканевое образование мелких пузырьков газа. Через 47,5 ± 1,5 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) темно-вишневый цвет крови менялся на алый цвет. Ультразвуковое исследование крови, которое было проведено сквозь стенку пакета, показало, что в ней происходило образование пузырьков газа и уменьшение ультразвуковой эхогенности крови. Пузырьки газа имели мелкие размеры, постепенно перемещались кверху, размещались в верхнем слое крови и через несколько секунд лопались без образования пены. Через 3 минуты после инъекции раствора в кровь было произведено выливание крови из пакета через вторую инъекционную иглу с помощью устройства для переливания крови. В результате выливания крови на чашку Петри обнаружено, что при этом удалось вылить из пакета практически всю кровь, которая сохраняла алый цвет. Причем, кровь вытекала из устройства наружу без пузырьков газа. Кровь внутри пакета сохраняла алый цвет на протяжении всего последующего периода наблюдения.

Четвертая серия опытов была проведена с раствором 0,85% натрия хлорида, 0,10% натрия гидрокарбоната и 0,06% перекиси водорода. Показано, что через 8,8 ± 0,3 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) после введения этого раствора в кровь в ней начиналось слабое внутритканевое образование очень мелких и редких пузырьков газа, под влиянием которого через 56 ± 2,0 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) кровь изменяла свой цвет с темно-вишневого на алый. Ультразвуковое исследование крови, которое было проведено сквозь стенку пакета, показало, что в ней происходило слабое образование пузырьков газа и незначительное уменьшение ультразвуковой эхогенности крови. При этом пена не образовывалась. В крови появлялись лишь единичные и мелкие пузырьки газа, которые очень медленно всплывали вверх и через несколько секунд лопались над кровью. Показано, что кровь сохраняла алый цвет на протяжении всего последующего периода наблюдения.

Пятая серия опытов была проведена с раствором 0,85% натрия хлорида, 0,10% натрия гидрокарбоната и 0,05% перекиси водорода.Показано, что через 9,7 ± 0,4 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) после введения этого раствора в кровь в ней начиналось слабое и очень плохо видимое внутритканевое образование очень мелких пузырьков газа, под влиянием которого через 61 ± 2,2 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) кровь изменяла свой цвет с темно-вишневого на алый. Ультразвуковое исследование крови, которое было проведено сквозь стенку пакета, показало, что в ней происходило слабое образование пузырьков газа и незначительное уменьшение ультразвуковой эхогенности крови. При этом пена не образовывалась. В крови появлялись лишь единичные и мелкие пузырьки газа, которые очень медленно всплывали вверх и через несколько секунд лопались над кровью. Показано, что кровь сохраняла алый цвет на протяжении всего последующего периода наблюдения.

Шестая серия опытов была проведена с раствором 0,85% натрия хлорида, 0,10% натрия гидрокарбоната и 0,04% перекиси водорода.Показано, чтопосле введения в кровь этотраствор медленно всплывалвверх без образования пузырьков газа в крови.Затем раствор размещался надкровью. При этом цвет основной массы крови оставался темно-вишневым,но через 15 минутверхний слой крови толщиной около 1,5 см приобрел алый цвет. В последующие 60 минут наблюдения состояние взаимодействующих масс изменилось незначительно.

Следовательно, раствор 0,85% натрия хлорида, 0,1% натрия гидрокарбоната и0,05 – 0,29% перекиси водородаможетвволдиться в плазму венозной крови с целью насыщения ее эритроцитов кислородом и превращения венозной крови в артериальную кровь без введения в нее газа кислорода. Данное средство получило название «Гипероксигенированное средство М.Г.Сойхер для насыщения венозной крови кислородом» [18].

Параллельно с этим была изучена биологическая активность раствора перекиси водорода в опытах с аквариумными рыбками при их острой потенциально смертельной гипоксии. Полученные нами результаты показали, что в норме в начале гипоксии рыбкипринимают неподвижное состояние, которое при температуре воды +15 и +25°Сдлится у рыбок породы гуппи соответственно 56,5 ± 2,1и 24,3 ± 1,4 минут (Р ≤ 0,05, n = 25). После этого у рыбок появляются судорожные движения туловищем, жаберными дугами, плавниками, хвостом, широко открывается рот, и рыбки начинают интенсивно пропускать воду через рот и жабры. При температуре воды +15 и +25°С высокая двигательная активность рыб породы гуппи длится соответственно 98,5 ± 1,1 и 44,5 ± 0,6 секунд(Р ≤ 0,05, n = 25). После этого рыбки становятся неподвижными, опускаются на дно емкости, переворачиваются животом вверх, а затем всплывают вверх. В состоянии вверх животом и с редкими дыхательными движениями рта и жаберных дуг рыбы находятся еще около 1 минуты и только затем погибают.

Следовательно, раствор перекиси водорода вполне пригоден для инъекций в воду с рыбками с целью обеспечения их кислородом без растворения в воде газа кислорода.

Таким образом, предложен раствор перекиси водорода для инъекций, который способен заменять собой газообразный кислород для клеток крови человека и рыб.

Источник