На что берут кровь у крс
Как правильно брать кровь у КРС: особенности и техники выполнения
Лечебно-профилактические мероприятия в скотоводческой сфере требуют особого внимания и регулярности. Для этого выполняют периодический забор крови у КРС, чтобы проверить здоровье животного. От техники выполнения процедуры зависит качество исследования и будущая производительность племенного поголовья скота.
Как правильно подготовить животное
Кровь у коров берут на анализ для исследования ее биохимического состава. Это помогает исключить инфекционные болезни, подтвердить возможный диагноз ветеринара. Для этого нужна венозная кровь, которую проверяют на лейкоз, бруцеллез, туберкулез. Чтобы не травмировать сильно животное, важно правильно его подготовить к медицинской процедуре.
Обычно забор берут утром перед кормлением. После приема пищи нельзя брать анализ в течение 5 ч. Для серологического исследования берут по 7-10мл материала от КРС. Место для взятия пробы бреют электрической машинкой для стрижки коров для удаления волосяного покрова. Если нужно, то скотину предварительно фиксируют, а после участок нужно обработать антисептическим средством.
Иглы для забора материала должны быть с коротким срезом и достаточно большим диаметром, чтобы не повредить противоположную стенку вены, не вызвать повреждения эритроцитов. Перед использованием иглы нужно прокипятить в дезинфекционном кипятильнике.
Методики, которые не требуют фиксации животного, легче переносятся коровами. Любой стресс скажется на количестве удоя, а это принесет финансовые потери. Нельзя брать кровь у самок за 3 недели до отела или в течение этого же времени после родов. Чтобы не было проблем в будущем, соблюдайте технику забора крови, выбирая менее травматичный вариант для животного и самый безопасный для ветеринара.
Все популярные техники забора крови у скота
Взять кровь на анализ у животного можно из хвостовой, яремной и молочной вен. Процедура имеет свои особенности для каждой из зон, но все зависит от скорости и местоположения кровотока.
Из молочной вены
Она находится на животе коровы с 2-х сторон, сбоку от вымени. Лучше всего ее видно у взрослых особей. Этот вариант менее предпочтителен, так как у животного эта зона считается очень чувствительной. Плюс ко всему эта вена залегает более глубоко, чем это кажется на первый взгляд. Корову придется фиксировать, удерживать с разных сторон. А если нет специального оборудования, то для забора крови придется привлекать несколько человек.
Процесс проходит таким образом после удаления волос и обработки антисептиком:
Такая методика может быть травматичной для крупного рогатого скота, что скажется на удоях. Обычно фермеры стараются использовать другие методики.
Из яремной вены
Для этого используют кровопускательную иглу и стерильную пробирку, куда набирают биоматериал по стенке. Сосуд следует расположить к нижней трети шеи животного. Голову придется зафиксировать, что тоже является стрессом для коровы. Чтобы вызвать быстрое наполнение вены, уменьшить ее подвижность, кровеносный сосуд можно сдавить резиновым жгутом в середине шеи.
Материал в таких условиях считается нестерильным, а жидкость во время забора может разбрызгиваться.
К минусам этой методики можно отнести:
В конце нужно добавить, что полученные пробы – нестерильные.
Из хвостовой вены
Такой метод отличается высокой скоростью забора биологического материала. Животное в этом случае фиксировать не нужно, а сама процедура легко переносится КРС. Последние методики в заборе крови как раз нацелены на взятие материала из хвостовой вены у коров.
Как проходит процедура:
Методика исключает контакт ветеринара с биоматериалом животного, а это является самым большим преимуществом. Трудности в заборе крови в сосуде создает слабый кровоток в этой части тела скота, но вакуумные системы помогают решить эту проблему. В результате процедура выходит эффективной и максимально безопасной.
В чем плюсы вакуумных систем
Применение вакуумных технологий для получения анализа помогает выполнить процедуру КРС максимально быстро и безопасно. Эта методика отлично работает на хвостовой вене. Процесс никак не травмирует скот, убирает прямой контакт ветеринара и животного с биологическим материалом.
Оборудование состоит из иглы и шприца с контейнером. Диаметр иглы обычно составляет 0,9 мм, она снабжается клапаном, который блокирует вытекание крови, а это снижает вероятность появления осложнений. Корпус шприца сделан из прочного пластика, само приспособление играет роль транспортного контейнера. В этой же емкости легко выделить сыворотку или добавить антикоагулянт.
Плюсы вакуумной системы:
Маркировка на таком изделии разрешает использование цветового кодирования, а это позволит сортировать полученные пробирки.
Какие могут быть ошибки
При выполнении обычной методики получения крови на анализ, например, из яремной вены скота, есть вероятность попадания материала на людей и окружающие вещи. Если скот заражен, то появляется риск расползания инфекции по ферме. При этом открытый способ отнимает много времени, требует определенной подготовки (минимум – фиксации животного), сноровки и предельной аккуратности.
Если нарушить нормы асептики и техники получения анализа у КРС, то готовый образец может не отвечать нужным требованиям. У коровы же могут появиться гематомы и абсцессы. Не нужно форсировать забор, так как произойдет частичный гемолиз кровяных клеток.
Как хранить пробу и сыворотку крови
Материал нужно поместить в холодильник при температуре +2…+4°С. Если придется длительное время хранить сыворотку, то нужна температура +20°С. Любое нарушение этих условий привлечет за собой погрешности в анализе. Неумелое встряхивание пробирок во время перемешивания их содержимого или в процессе транспортировки тоже вызывает гемолиз эритроцитов.
Сыворотку крови нужно направить на исследование в течение первых суток после взятия пробы, но не позже 3-го дня (в исключительных случаях). На каждой пробирке указывают номер, кличку животного, ФИО владельца коровы. Все пробы закрывают плотно стерильными пробками, ставят в вертикальное положение для пересылки. Зимой анализы нужно тщательно упаковать, чтобы при перевозке они не замерзли. Обязательно ветеринар, приглашенный на ферму для забора крови, готовит вместе с пробами сопроводительный документ в двух экземплярах.
Особенности взятия крови у коров и свиней
Из статьи вы узнаете, как брать кровь у крупного рогатого скота, свиней, хранить и стабилизировать биопробы
В ветеринарных лабораториях уточняется диагноз, определяется эффективность обработок, выявляются скрытые патологические процессы… Первым делом отбирается образец (биопроба). Речь идет о крови, продуктах жизнедеятельности (моче и кале), секрете молочной железы, поте, содержимом желудка, рубца и кишечника, тканях, кусочках органов. Чаще исследуется кровь. Именно о ней мы сегодня и поговорим. Вы узнаете, как получают такой материал у разных видов животных, доставляют его в лабораторию.
В силу нестабильности химического состава крови для получения достоверных результатов нужно соблюдать правила отбора и хранения биологического материала.
Нюансы отбора материала
При отборе крови учитывается суточная динамика и соблюдаются правила антисептики. Кровь следует отбирать перед кормлением. Если же животное получило корм, то надо выждать не менее пяти часов. В крови, отобранной раньше, концентрация белка, глюкозы, липидов, лейкоцитов и др. выше физиологической нормы. Пример: норматив по глюкозе в сыворотке крови у КРС – от 2,2 до 3,5 ммоль/л, но если отобрать кровь через час после кормления, значение показателя увеличивается как минимум в два раза.
Один из факторов, определяющих концентрацию минералов, эритроцитов, – время суток. По этой причине материал повторно отбирается в одни и те же часы.
В некоторых случаях взятие пробы невозможно без нарушения целостности тканей. В подобных ситуациях обязательна асептика-антисептика. Лучший антисептик – 70-градусный этиловый спирт. Правда, ветеринары пользуются им, когда есть необходимость во введении туберкулина. Также эффективен спирт-эфир. В крайнем случае пользуются 3-процентной карболовой кислотой.
В стране имеется широкий ассортимент антисептических средств для обработки места прокола (для взятия крови или инъекции). Основа львиной части антисептиков представлена этиловым спиртом, используемым вкупе со вспомогательными бактерицидными компонентами, усиливающими действие.
При выборе препарата нужно руководствоваться составом, ценой и удобством применения. Себя зарекомендовали антисептические спиртовые средства, используемые в виде аэрозолей.
Большое значение имеет анализ крови и лекарства. Материал для анализа отбирается до лечебных мероприятий. Но в любом случае берутся в учет лекарства, которые получало животное. Так, по причине внутривенного введения средства иногда уменьшается количество эритроцитов, гемоглобина… Использование вакцины вызывает лейкоцитоз.
Чем быстрее кровь окажется в пробирке, тем меньше вероятность получения искаженных результатов. На билирубине, витамине В2 отрицательно сказывается свет. Поэтому пользуются светонепроницаемыми пакетами. Допускается временное хранение материала в ящике. При риске разрушения вещества под влиянием кислорода кровь отбирают в пробирку с вазелиновым маслом: так получаемая сыворотка находится под слоем масла и недоступна для воздуха.
Моменты, учитываемые при выборе места отбора крови:
Взятие крови у коровы
У КРС кровь берется из яремной, хвостовой и молочной вен.
Отбор пробы из яремной вены – наиболее популярная процедура, но требует определенной сноровки при нахождении места прокола и при фиксации животного. Корове необходимо тщательно фиксировать голову и шею, что сказывается на доступе к яремной вене.
В плане безопасности кровь лучше брать из хвостовой вены. Правда, в этом случае приходится иметь дело с медленным кровотоком. Такая проблема решается посредством так называемых «пробирок с вакуумом», более тщательной очистки места прокола и опыта. Допустимо использовать «вакуум» шприца: после прокола кожи и сосуда к игле присоединяем шприц (со стабилизатором или без) и набираем кровь. Стоит помнить, что форсированное насасывание крови в шприц может привести к частичному разрушению (гемолизу) клеток крови, что отразится на корректности результатов. И все же мы рекомендуем практиковать именно этот способ отбора крови.
Техника отбора крови из хвостовой вены:
Молочные вены определяются как тяжи на нижнебоковой поверхности живота с двух сторон, идущие от вымени вперед. Они очень хорошо видны и доступны, что создает псевдо-эффект банальности процедуры. На самом деле при проколе молочных вен самая главная проблема – безопасность! Во-первых, действия происходят вблизи тазовых конечностей. Во-вторых, кожа, покрывающая сосуд, достаточно толстая, поэтому необходимо точно рассчитать силу удара при проколе. Автор получал травмы рук при таком взятии крови у коровы.
Взятие крови у свиней
Лучшее место для процедуры – сосуды ушных раковин, кончик хвоста, глазной синус, передняя полая вена.
Многие специалисты отсекают кончик хвоста, что ведет к гемолизу. При этом стерильность пробы оставляет желать лучшего. Картина ухудшается кровотечением и возникающим каннибализмом.
Эффективнее брать материал из передней полой вены, но для этого нужен определенный опыт. К тому же, такой способ является трудоемким.
Удобнее материал брать из глазного синуса. Стратегия взятия биопробы:
С опытом легко определяется необходимая глубина введения иглы: 2-3 см – у взрослых свиней, 0,5-1,0 см – у поросят. Начинающим ветврачам можно иглу вводить до ощущения упора в кость.
Тип крови
Перед процедурой надо знать, какая кровь нужна для исследования: стабилизированная («несвернутая») или нестабилизированная (свернутая).
Стабилизированную кровь предохраняют от свертывания, добавляя в нее антикоагулянт. Такая кровь, как правило, используется для общего клинического анализа (определения количества эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов, гемоглобина, гематокрита, СОЭ, цветового показателя).
Применяемые на практике антикоагулянты представлены различными солями и биологическими веществами:
Чтобы стабилизировать кровь у пернатого, удваивается доза антикоагулянта.
СОВРЕМЕННАЯ МЕТОДИКА ПОЛУЧЕНИЯ ПРОБ КРОВИ У КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА
До сегодняшнего дня широко распространённым способом забора крови у животных (в частности КРС) остаётся взятие её из ярёмной вены либо из хвостовой вены, но также, как и из ярёмной, с использованием кровопускательных (или инъекционных) игл и стеклянных пробирок (не вакуумных). Но данная методика имеет ряд серьёзных недостатков:
Кровь набирается через кровопускательную иглу самотёком в открытую пробирку. Это очень часто приводит к разбрызгиванию крови, в связи с чем высок риск инфицирования животных и человека. Некоторые используют шприцы, но это не избавляет от необходимости переливать кровь в открытую пробирку. Если нужна не сыворотка, которая выделится в стеклянной пробирке (но не в пластиковой), а цельная кровь, то нужно вручную отмерять необходимый для исследований объём крови и затем вручную добавлять нужное количество реагентов (где тоже возможны ошибки в дозировке). К тому же, переливание крови из шприца в пробирку зачастую приводит к гемолизу, что искажает результаты исследований или делает их невозможными. Также ошибочным является взятие крови шприцом с последующим переливанием крови в вакуумную пробирку.
Набранная самотёком в открытую пробирку, кровь теряет свою стерильность из-за воздействия на неё внешней среды, следовательно, результаты лабораторных исследований могут быть искажены. Стеклянные пробирки закрываются либо нестерильными резиновыми пробками, либо ватными тампонами, что часто приводит к открытию пробирки с разлитием крови.
Стеклянные пробирки часто разбиваются – соответственно, нужно не только ликвидировать последствия этого в виде осколков и разлитой крови, но и повторно брать пробу крови у животного.
При заборе крови из ярёмной вены необходима фиксация животного, то есть привлечение к процедуре дополнительного персонала, с соответствующими затратами труда, нервов, времени и финансов.
Жёсткая фиксация, а также боль при взятии крови толстостенными кровопускательными иглами большого диаметра вызывает стресс у животных. В случае с КРС это приводит к неизбежному снижению надоев молока от 0,3 до 1 л в день в течение нескольких дней. На 1000 голов убытки от падения надоев могут составлять до 20-25 тыс. руб (кстати, одна только эта сумма значительно превышает стоимость вакуумных систем забора крови, необходимых для забора крови у 1000 голов).
Грубая фиксация приводит к массовому перезаражению лейкозом ранее здоровых животных, через травмирование слизистой носовой полости.
В связи с этим разработка новых, надёжных, нетравмирующих животных и наименее трудоёмких методов взятия крови у крупного рогатого скота, является актуальной задачей.
В комплексе это позволило хозяйствам, использующим современную технологию, избегать прямых экономических потерь, в первую очередь связанных с исключением снижения уровня надоев.
Рис. 1. Вакуумный шприц-контейнер и специальная игла.
Рис. 2. Закрытая система S-Monovette для взятия крови.
Устоявшаяся методика взятия крови у КРС:
Кровь берут из яремной вены;
Место, где предполагается произвести прокол, дезинфицируют спиртом или 5% раствором йода;
Основные особенности закрытой системы S-Monovette
Удобство маркировки и транспортировки;
Устойчивость к низким температурам;
Длительный срок годности;
Игла: Диаметр (0.9 мм);
Отсутствие осложнений после взятия крови;
Предотвращение вытекания крови при пункции вены;
Минимизация повреждений клеток крови (гемолиз);
Оптимальный угол заточки иглы;
Отсутствие «забивания» и тромбирования иглы;
Кровь берут из хвостовой вены.
Для взятия крови животное не фиксируют.
Хвост животного берут рукой в области средней трети и медленно поднимают вверх.
Место взятия крови, область 2-5 хвостовых позвонков, дезинфицируют спиртом или 5% раствором йода.
Кровь берут в средней трети тела 2-5 хвостовых позвонков, находящейся на линии, идущей вдоль хвоста и делящей его на 2 симметричные части.
Сокращение времени взятия крови ветврачом; (до 200 животных за 2 часа).
Отсутствие фиксации животного.
Исключение контакта ветврача с кровью на всех этапах взятия и транспортировки крови.
Предупреждение распространения инфекций через кровь и загрязнения (контаминации) объектов окружающей среды; (особенно актуально при лейкозе КРС).
Минимизация осложнений и стресса у животных.
Отсутствие сокращения надоев в результате стресса и осложнений.
Возможность получения стерильной крови.
Иглу вводят под углом 90° до упора на глубину 5-10 мм. Преимущества взятия крови безопасными системами из хвостовой вены:
Библиографический список
Биохимический профиль крови у коров с язвенными процессами в области копытец / В.К. Якоб, Е.М. Марьин, П.М. Ляшенко, А.В. Сапожников, В.А. Ермолаев // В сборнике: Молодежь и наука XXI века. Материалы IV Международной научно-практической конференции. 2014. С. 152-161.
Взаимосвязь между гемостазиологическими показателями при асептических и гнойных ранах у крупного рогатого скота / В.А.Ермолаев, В.И. Ермолаева //В сборнике: Фундаментальные и прикладные проблемы повышения продуктивности сельскохозяйственных животных. материалы международной научной конференции, посвященной 70-летию профессора С.А. Лапшина. Министерство общего и профессионального образования Российской Федерации, Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарева; ответственный редактор С.А. Лапшин. 1998. С. 112-114.
Влияние гидрофильных мазей на гемостазиологические показатели плазмы крови у телят с гнойными ранами / П.М. Ляшенко, В.А. Ермолаев // В сборнике: Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения. Материалы V Международной научно-практической конференции. Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия; Главный редактор А.В. Дозоров; ответственные редакторы: В.А. Исайчев, И.И. Богданов. 2013. С. 104-107.
Влияние пептидных биорегуляторов на местный иммунитет при бронхопневмонии / С.И. Лютинский, О.В. Крячко, В.Х. Хавинсон, А.Л. Кожемякин //Ветеринария. 1993. № 1. С. 44-46.
Влияние тимогена на иммунную систему поросят при неспецифической брон-хопневмонии / С.И. Лютинский, О.В. Крячко, В.Х. Хавинсон, С.В. Серый // Ветеринария. 1991. № 9. С. 30-32.
Гематология: учебное пособие /В.А. Ермолаев, Е.М. Марьин, А.В. Сапожников, П.М. Ляшенко, А.З. Мухитов, А.В. Киреев. –Ульяновск: Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина, 2016. – 135 с.
Динамика биохимических показателей крови при лечении гнойных кожно-мышечных ран у телят/И.С. Раксина, В.А.Ермолаев//Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии.2012. № 1. С. 95.
Динамика изменения гемостазиологических показателей при лечении гнойных ран у телят/Е.Н. Никулина, В.А. Ермолаев, П.М. Ляшенко//Известия Оренбургского госу-дарственного аграрного университета. 2012. Т. 4. № 36-1. С. 78-79.
Динамика показателей белкового обмена крови у коров, больных гнойным пододер-матитом / Е.М. Марьин, В.А. Ермолаев, О.Н. Марьина, В.В. Идогов // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. 2013. № 3 (23). С. 86-89.
Динамика показателей клинического анализа крови у ортопедически больных коров /В.А. Ермолаев, Е.М. Марьин, П.М. Ляшенко, А.В. Сапожников // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2016. № 10 (144). С. 116-122.
Ермолаев, В.А. Гематология: учебное пособие /В.А. Ермолаев, А.З.Мухитов. –Ульяновск: Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина, 2015. – 112 с.
Ермолаев, В.А., Никулина Е.Н. Динамика морфологических показателей крови телят с гнойными ранами / В.А. Ермолаев, Е.Н. Никулина // Материалы Международной научно-практической конференции «Кадровое и научное обеспечение инновационного развития отрасли животноводства»// Учёные записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. – Казань, 2010. – Т. 203. – С. 109-114.
Заживление инфицированных кожно-мышечных ран у собак под воздействием све-тодиодного излучения красного диапазона / А.В. Сапожников, В.А. Ермолаев, Е.М. Марьин, П.М. Ляшенко // В сборнике: Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения. Материалы V Международной научно-практической конференции. Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия; Главный редактор А.В. Дозоров; ответственные редакторы: В.А. Исайчев, И.И. Богданов. 2013. С. 137-142.
Исследование клинических и гематологических показателей у коров с язвенными дефектами в области копытец / Е.М. Марьин, В.А. Ермолаев, В.К. Якоб, О.Н. Марьина // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. 2013. № 4 (24). С. 72-76.
Коррекция системы гемостаза при болезнях пальцев у крупного рогатого скота/ П.М. Ляшенко, В.А. Ермолаев, Е.М. Марьин // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2013. № 6 (44). С. 80-81.
Крячко О.В. Применение пептидных биорегуляторов при бронхопневмонии поросят / О.В. Крячко // Ветеринария. 2003. № 11. С. 45-49.
Крячко О.В. Влияние ронколейкина на гематологические показатели у лошадей при дерматите / О.В. Крячко, О.В. Романова // Ветеринария. 2007. № 6. С. 45-48.
Крячко О.В. Нагрузочные тесты как показатель перспективности назначения имму-номодуляторов при бронхопневмонии поросят / О.В. Крячко// Ветеринария. 1999. № 3. С. 36-37.
Крячко О.В. Ронколейкин в качестве средства монотерапии при хронических об-структивных болезнях легких у лошадей / О.В. Крячко, О.В. Романова, Е.А. Шевченко // Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. 2005. № 4. С. 22-23.
Крячко О.В. Системный анализ иммунобиологических показателей у поросят при острой неспецифической бронхопневмонии / О.В. Крячко, С.И.Лютинский, В.В. Томсон, С.М. Сулейманов. Великие Луки – СПб.-Воронеж, 1999.- 27 с.
Методы исследования системы гемостаза в ветеринарии : Методические рекомендации / В.А.Ермолаев, Б.С.Семенов, С.И. Лютинский. – Ульяновск: Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия, 1998. – 73 с.
Минеральный обмен крови у коров, больных гнойным пододерматитом / Е.М. Марьин, В.А. Ермолаев, В.В. Идогов // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. 2016. № 1 (33). С. 111-114.
Никулина, Е.Н. Динамика гематологических показателей при лечении гнойных ран у телят / Е.Н. Никулина, П.М. Ляшенко, В.А. Ермолаев // Ветеринарная медицина. Современные проблемы и перспективы развития: Материалы Международной научно-практической конференции. ФГОУ ВПО «Саратовский ГАУ». – Саратов: ИЦ «Наука», 2010. – С. 315-317.
Никулина, Е.Н. Динамика изменения гемостазиологических показателей при лечении гнойных ран у телят/ Е.Н. Никулина, В.А.Ермолаев, П.М.Ляшенко//Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2012. Т. 4. № 36-1. С. 78-79.
Регенерационные и дисрегенерационные процессы при лечении пододерматитов у коров / В.А. Ермолаев, Е.М. Марьин, П.М. Ляшенко, А.В. Сапожников // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2016. № 12 (146). С. 120-130.
Для чего нужны биохимические исследования крови у КРС?
Что нужно знать для балансировки рациона коровам? Это не только химический анализ кормов, но биохимические показатели крови крс. В ходе исследований можно увидеть реальную картину обмена веществ у животных.
Если вы не знаете, что такое биохимические исследования проб сыворотки крови, обратитесь к своему ветеринарному врачу. У него наверняка есть похожий документ, который выложен здесь ниже. Если нет, срочно с ветеринарной службой исследуйте кровь стада. Это даст ответы на многие вопросы.
Биохимический анализ крови – это метод лабораторный диагностики, который позволяет определить работу внутренних органов, получить информацию о метаболизме (обмене веществ) и выяснить потребность в макроэлементах.
Если вам сложно уловить суть, то попробуйте перевести данную проблему на самого себя.
Вы заболели, пошли в поликлинику, записались к врачу на прием. Что первым делом он просит вас сделать? Правильно! Сдать анализы.
Вот и в животноводстве все аналогично. Только необходимо работать на опережение. Увидев картину биохимии, зоотехник может подкорректировать рацион под потребность животного.
А за этим следует улучшение здоровья и, как правило, увеличение продуктивности.
Хочу отметить, что пробы крови, представленные в документе, взяты от проблемных коров. К примеру, у коровы по кличке Аура был кетоз. Данное заболевание подтвердило наличие кетоновых тел в сыворотки крови.
Правильнее будет взять пробы крови у нескольких физиологических групп:
Возьмите от каждой группы минимум 10 образцов проб.
КРАТКО ОБ ЭЛЕМЕНТАХ, КОТОРЫЕ УКАЗАНЫ В ДАННОМ ИССЛЕДОВАНИИ:
Кальций – является основным элементом в строении костной ткани, крови, нервной и мышечной ткани.
Фосфор, так же как и кальций, основа костной ткани. Участвует в обмене жиров и углеводов. Данный элемент необходим для нормального развития микроорганизмов в рубце коровы.
«Недостаток кальция и фосфора в организме животных может привести к рахиту, остеомаляции, остеопорозу, остеофиброзу».
Белок (он же протеин) – главная составляющая всех живых клеток. Протеин участвует во всех жизненно важных процессах: размножении, росте, развитии, продуктивности, а так же является основным компонентом ферментов, гормонов и иммунных тел.
Как видите, роль белка в организме значима, более подробно о роли протеина и других элементов, мы еще поговорим в отдельных статьях на блоге.
Резервная щелочность – по сути это показатель кислотно-щелочного соотношения в организме.
«Количество двуокиси углерода (мл), которое может связать100 мл плазмы крови»
Снижение данного параметра говорит о сдвиге кислотно-щелочного равновесия в сторону ацидоза, повышение — в сторону алкалоза.
Каротин – является провитамином (биохимическим предшественником витамина А). Витамин А участвует в развитии и росте клеток, обеспечивает нормальное состояние слизистых оболочек, поддерживает зрительные функции.
Кетоновые тела – промежуточные продукты обмена веществ белков, жиров и углеводов, которые образуются в печени. Это бета-оксимасляная кислота, ацетоуксусная кислота, ацетон. Повышенный уровень таких веществ говорит о нарушении обмена веществ.
НОРМЫ БИОХИМИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ КРОВИ У КОРОВ
Отлично. У нас есть результаты анализов. Мы знаем, на что влияет каждый показатель. Осталось только решить – что с этим делать?
На мой взгляд, есть три варианта развития событий.
1. Постараться сбалансировать рацион, что на практике, практически нереально. Улучшать кормовую базу при заготовке силоса, сенажа, сена. Обратить внимание видовой состав трав (отдать предпочтение сахару или протеину).
2. Включить в рацион животных кормовые добавки, которыми заполнен наш рынок. Здесь только вопрос цены и качества. К примеру, поставщик примексов в мое хозяйство, разработал минеральную добавку, чтобы восполнить пробелы в рационе.
3. Попробуйте найти медикаментозный выход. К примеру, существует множество препаратов, которые содержат витамин А (карток, карсел, элеовит, карофертин, каролин и др). Почему бы вам таким способом не восполнить дефицит данного витамина?